朋友们，你们知道生工的PCR试剂盒这个问题吗？如果不了解该问题的话，小编将详细为你解答，希望对你有所帮助！
pcr产物纯化试剂盒可用于纯化酶切后的质粒吗?
pcr纯化试剂盒可以纯化掉酶 首先，采用的是质粒模板；其次，扩增得到的非单一条带，如果不纯化直接酶切，那么得到的将是带有相应酶切位点的几种片段，继续试验的话，菌落PCR鉴定时可能会出现几种不同大小的条带。
单酶切要看有几个切点，如果只有一个切点的话，可以直接纯沉或是使用PCR产物纯化试剂盒就可以了。如果是双切点的话，需要走琼脂糖凝胶，分离出你需要的DNA，使用琼脂糖凝胶回收试剂盒进行DNA回收。
PCR产物纯化是去除多余的dNTP和引物二聚体。用纯化好的片段连接转化可以降低背景，提高转化效率。通常转化后我们用几种方法来确认转化子，抽质粒酶切是比较可靠的。选择酶切大小与预计一致的克隆去测序。
pcr产物(P出来很亮)用回收试剂盒纯化后,没有条带了
你要确定你PCR有没有扩增出条带，先用检测胶点了看一下。如果检测胶可以看到条带，回收胶看不到的话，可能是你PCR的产物的量太少了，回收胶胶孔宽，PCR结果不好的条带可能就看不到了。
那个试剂盒我用过，回收效果不是很好，建议你使用TaKaRa的，要不用全式金的也凑合。这两个胶回收试剂盒是我使用过的不错的，当然了，比如Promege，Clontech质量就更好了。
.2g琼脂糖，20mlTBE，用一厘米左右的梳子，上样的时候，上样量20微升，配1微升loadingbuffer可得到胶回收。DNA片段通过pcr扩增后，进行跑胶、切胶回收。跑胶染色后有很亮的条带，但是胶回收后什么也没有。
物理原因：变性对PCR扩增来说相当重要，如变性温度低，变性时间短，极有可能出现假阴性；退火温度过低，可致非特异性扩增而降低特异性扩增效率退火温度过高影响引物与模板的结合而降低PCR扩增效率。
降解，在BstNI酶切过程中降解了。水不干净常常是降解的原因，而且你的酶切在60度进行，温度高，时间长，很容易降解。你试试换水，同时缩短酶切时间，看看会不会好些。
P到条带之后，你可以用PCR产物继续P，或者用胶回收产物继续P。这两者不能P出条带的话，也是很正常的。
生工一个pcr试剂盒能做多少标本
t是指48个测试，不一定能做48人份标本，如果是定量测试的话，还要去掉空白，标准，质控，按照说明书严格操作，需要一个空白，4个标准，3个质控，最多还能做40个标本。如果分多次做，做的标本数就更少了。
如果是混检，一个试管会放多个标本或采样，有的是一个试管放5个，有的是一个试管放10个，具体看核酸检测的方式。核酸检测可分为分离检测和混合检测。
最少三个。因为为了保证实验能够重复，所以最少三个样品，而且也符合生物统计学的最低样本数。 如果要有效估计参数可以根据有效样本得出n》30或者n》3*(k+1)。 只看你要多大的精度如果精度随着样本数的增加而增加。
那么可以做94*4=376个。当然这只是理论上的最大值，实际操作的时候受很多限制，如多重PCR之间的交叉反应导致无法合孔，样本量不足等。
大概能做40个标本。分时间段的说法我没听懂。一个试剂盒如果一次没有用完当然可以继续用多次。区别在于多次使用的时候每次都需要做标准曲线，比合在一起做的话多费一些料，所以确定重组蛋白和相应的试剂够用就好了。
T 可做90个样本加6个标准曲线 以96T试剂盒来算，定量的试剂盒一般可以做90个左右的样品，定性的试剂盒可以做94个左右的样品 96T的ELISA试剂盒，去除标准品复孔检测，最多还能检测80个标本；48T的最多30个样本。
PCR试剂一般怎么类,大致可以分成几类。
是用于做PCR的试剂。有以下几类：提取试剂：包括了各种提取DNA的常用试剂，和纯化DNA所用的试剂；PCR扩增试剂：主要是DNA聚合酶酶、四种碱基、缓冲试剂、引物等；产物检测试剂：琼脂糖、聚丙烯酰胺凝胶等等。
引物 4 模板 5 酶 如果你买MIX的话，就只需要MIX，模板以及引物。
三种。荧光，汉语词语。又作“萤光”，是指一种光致发光的冷发光现象。
广义概念 1 分类 广义概念下的定量PCR技术可以分为五种类型：（1）外参法+终产物分析。所谓“外参法”是指样本与阳性参照在两个反应容器内反应。
PCR试剂简单的理解就是用于做PCR的试剂。实际做PCR的试剂很多，在这儿可以理解为达到PCR级别的试剂。试剂中不应该存在对PCR反应有影响的杂质。象核酸、核酸酶，如果是水的话，盐离子尽可能的小，最好是超纯水。
以上内容就是解答有关生工的PCR试剂盒的详细内容了，我相信这篇文章可以为您解决一些疑惑，有任何问题欢迎留言反馈，谢谢阅读。
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